一般來說我們獲得的芯片數(shù)據(jù)在進(jìn)行下游分析時(shí),表達(dá)矩陣一般都應(yīng)該是log2后的結(jié)果,那么如果我手里有一份二代測(cè)序數(shù)據(jù)的代碼,全盤接收,也給log了,而我又沒細(xì)看這個(gè)地方還有一步log的代碼,再加上對(duì)這個(gè)log如果沒有足夠的清醒意識(shí),不能嚴(yán)格區(qū)分log和不log的應(yīng)用場(chǎng)景,那么會(huì)得到怎樣的結(jié)果呢?數(shù)據(jù)集來自
GSE21933
,從下載數(shù)據(jù)到后面獲得火山圖的代碼,都在下面啦!
rm(list = ls())
options(stringsAsFactors = F)#在調(diào)用as.data.frame的時(shí),將stringsAsFactors設(shè)置為FALSE可以避免character類型自動(dòng)轉(zhuǎn)化為factor類型
# 注意查看下載文件的大小,檢查數(shù)據(jù)
if(T){
f='GSE21933_eSet.Rdata'
# https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE38959
library(GEOquery)
# 這個(gè)包需要注意兩個(gè)配置,一般來說自動(dòng)化的配置是足夠的。
#Setting options('download.file.method.GEOquery'='auto')
#Setting options('GEOquery.inmemory.gpl'=FALSE)
if(!file.exists(f)){
gset <- getGEO('GSE21933', destdir='.',
AnnotGPL = F, ## 注釋文件
getGPL = F) ## 平臺(tái)文件
save(gset,file=f) ## 保存到本地
}
load('GSE21933_eSet.Rdata') ## 載入數(shù)據(jù)
class(gset) #查看數(shù)據(jù)類型
length(gset) #
class(gset[[1]])
# 因?yàn)檫@個(gè)GEO數(shù)據(jù)集只有一個(gè)GPL平臺(tái),所以下載到的是一個(gè)含有一個(gè)元素的list
a=gset[[1]] #
dat=exprs(a) #a現(xiàn)在是一個(gè)對(duì)象,取a這個(gè)對(duì)象通過看說明書知道要用exprs這個(gè)函數(shù)
dim(dat)#看一下dat這個(gè)矩陣的維度,發(fā)現(xiàn) 有 53617 行
dat[1:4,1:4] #查看dat這個(gè)矩陣的1至4行和1至4列,逗號(hào)前為行,逗號(hào)后為列
pd=pData(a)
tumor=rownames(pd[grepl('T',as.character(pd$title)),])
normal=rownames(pd[grepl('N',as.character(pd$title)),])
dat=dat[,c(tumor,normal)]
dim(dat)
dat[1:4,1:4]
group_list=c(rep('tumor',length(tumor)),
rep('normal',length(normal)))
table(group_list)
}
if(T){
#你要的通過GPL下載
library(GEOquery)
# Download GPL file, put it in the current directory, and load it:
gpl <- getGEO('GPL6254', destdir='.')
colnames(Table(gpl))
head(Table(gpl)[,c(1,6)]) ## you need to check this , which column do you need
probe2gene=Table(gpl)[,c(1,6)]
dim(probe2gene)
#也可以這樣
# b=read.table('GPL6254.txt',
# sep = '\t',quote = '',
# fill=T,header = T)
# colnames(b)
# probe2gene=b[,c(1,10)]
probe2gene=probe2gene[probe2gene$GENE_SYMBOL != '',]
dim(probe2gene)
head(probe2gene)
colnames(probe2gene) <- c('probe_id','symbol')
dim(dat)
probe2gene <- probe2gene[probe2gene$probe_id %in% rownames(dat),]
dim(probe2gene)
dat <- dat[match(probe2gene$probe_id,rownames(dat)),]
dim(dat)
dat[1:4,1:4]
}
if(T){
ids <- probe2gene
dat <- as.data.frame(dat)
ids$median=apply(dat,1,median) #ids新建median這一列,列名為median,同時(shí)對(duì)dat這個(gè)矩陣按行操作,取每一行的中位數(shù),將結(jié)果給到median這一列的每一行
ids=ids[order(ids$symbol,ids$median,decreasing = T),]#對(duì)ids$symbol按照ids$median中位數(shù)從大到小排列的順序排序,將對(duì)應(yīng)的行賦值為一個(gè)新的ids
ids=ids[!duplicated(ids$symbol),]#將symbol這一列取取出重復(fù)項(xiàng),'!'為否,即取出不重復(fù)的項(xiàng),去除重復(fù)的gene ,保留每個(gè)基因最大表達(dá)量結(jié)果s
dat=dat[ids$probe_id,] #新的ids取出probe_id這一列,將dat按照取出的這一列中的每一行組成一個(gè)新的dat
rownames(dat)=ids$symbol#把ids的symbol這一列中的每一行給dat作為dat的行名
dat[1:4,1:4] #保留每個(gè)基因ID第一次出現(xiàn)的信息
dim(dat)
boxplot(dat)
dat=log(dat 1)
dat[1:4,1:4]
save(dat,ids,group_list,file = 'step1-getdata.Rdata')
load(file = 'step1-getdata.Rdata')
}
上面得到的表達(dá)矩陣dat和ids如下
rm(list = ls())
options(stringsAsFactors = F)
load(file = 'step1-getdata.Rdata')
# 每次都要檢測(cè)數(shù)據(jù)
dat[1:4,1:4]
## 下面是畫PCA的必須操作,需要看說明書。
dat=t(dat)#畫PCA圖時(shí)要求是行名時(shí)樣本名,列名時(shí)探針名,因此此時(shí)需要轉(zhuǎn)換
dat=as.data.frame(dat)#將matrix轉(zhuǎn)換為data.frame
dat=cbind(dat,group_list) #cbind橫向追加,即將分組信息追加到最后一列
library('FactoMineR')#畫主成分分析圖需要加載這兩個(gè)包
library('factoextra')
# The variable group_list (index = 54676) is removed
# before PCA analysis
dat.pca <- PCA(dat[,-ncol(dat)], graph = FALSE)#現(xiàn)在dat最后一列是group_list,需要重新賦值給一個(gè)dat.pca,這個(gè)矩陣是不含有分組信息的
fviz_pca_ind(dat.pca,
geom.ind = 'point', # show points only (nbut not 'text')
col.ind = dat$group_list, # color by groups
palette = c('#00AFBB', '#E7B800'),
addEllipses = TRUE, # Concentration ellipses
legend.title = 'Groups'
)
ggsave('all_samples_PCA_by_pCR.png')
rm(list = ls()) ## 魔幻操作,一鍵清空~
load(file = 'step1-output.Rdata') #此步為一個(gè)小插曲,即計(jì)算一下從第一行開是計(jì)算每一行的sd值,知道最后一行所需要的時(shí)間
dat[1:4,1:4]
cg=names(tail(sort(apply(dat,1,sd)),1000))#apply按行('1'是按行取,'2'是按列?。┤∶恳恍械姆讲睿瑥男〉酱笈判?,取最大的1000個(gè)
library(pheatmap)
pheatmap(dat[cg,],show_colnames =F,show_rownames = F) #對(duì)那些提取出來的1000個(gè)基因所在的每一行取出,組合起來為一個(gè)新的表達(dá)矩陣
n=t(scale(t(dat[cg,]))) # 'scale'可以對(duì)log-ratio數(shù)值進(jìn)行歸一化
n[n>2]=2
n[n< -2]= -2
n[1:4,1:4]
pheatmap(n,show_colnames =F,show_rownames = F)
ac=data.frame(g=group_list)
rownames(ac)=colnames(n) #把a(bǔ)c的行名給到n的列名,即對(duì)每一個(gè)探針標(biāo)記上分組信息(是'noTNBC'還是'TNBC')
pheatmap(n,show_colnames =F,show_rownames = F,
annotation_col=ac,filename = 'heatmap_top1000_sd.png')
得到的PCA圖如下,PCA圖顯示兩組分得很開,那么繼續(xù)往下做差異分析
#差異分析
if(T){
design <- model.matrix(~0 factor(group_list))
colnames(design)=levels(factor(group_list))
head(design)
exprSet=dat
rownames(design)=colnames(exprSet)
design
contrast.matrix<-makeContrasts('tumor-normal',
levels = design)
contrast.matrix ##這個(gè)矩陣聲明,我們要把 Tumor 組跟 Normal 進(jìn)行差異分析比較
colnames(design)
deg = function(exprSet,design,contrast.matrix){
##step1
fit <- lmFit(exprSet,design)
##step2
fit2 <- contrasts.fit(fit, contrast.matrix)
##這一步很重要,大家可以自行看看效果
fit2 <- eBayes(fit2) ## default no trend !!!
##eBayes() with trend=TRUE
##step3
tempOutput = topTable(fit2, coef=1, n=Inf)
nrDEG = na.omit(tempOutput)
#write.csv(nrDEG2,'limma_notrend.results.csv',quote = F)
head(nrDEG)
return(nrDEG)
}
deg = deg(exprSet,design,contrast.matrix)
head(deg)
save(deg,file = 'deg.Rdata')
}
看了一下,deg
的結(jié)果,如下兩張圖
感覺不太對(duì)勁,順勢(shì)做下火山圖,
## for volcano
if(T){
nrDEG=deg
head(nrDEG)
attach(nrDEG)
plot(logFC,-log10(P.Value))
library(ggpubr)
df=nrDEG
df$v= -log10(P.Value) #df新增加一列'v',值為-log10(P.Value)
ggscatter(df, x = 'logFC', y = 'v',size=0.5)
df$g=ifelse(df$P.Value>0.05,'stable', #if 判斷:如果這一基因的P.Value>0.01,則為stable基因
ifelse( df$logFC >1,'up', #接上句else 否則:接下來開始判斷那些P.Value<0.01的基因,再if 判斷:如果logFC >1.5,則為up(上調(diào))基因
ifelse( df$logFC < -1,'down','stable') )#接上句else 否則:接下來開始判斷那些logFC <1.5 的基因,再if 判斷:如果logFC <1.5,則為down(下調(diào))基因,否則為stable基因
)
table(df$g)
df$name=rownames(df)
head(df)
ggscatter(df, x = 'logFC', y = 'v',size=0.5)
ggscatter(df, x = 'logFC', y = 'v', color = 'g',size = 0.5,
label = 'name', repel = T,
#label.select = rownames(df)[df$g != 'stable'] ,
label.select =head(rownames(deg)), #挑選一些基因在圖中顯示出來
palette = c('#00AFBB', '#E7B800', '#FC4E07') )
ggsave('volcano.png')
ggscatter(df, x = 'AveExpr', y = 'logFC',size = 0.2)
df$p_c = ifelse(df$P.Value<0.001,'p<0.001',
ifelse(df$P.Value<0.01,'0.001<p<0.01','p>0.01'))
table(df$p_c )
ggscatter(df,x = 'AveExpr', y = 'logFC', color = 'p_c',size=0.2,
palette = c('green', 'red', 'black') )
ggsave('MA.png')
}
得到了火山圖,媽耶!
這也太好看了,如果上天告訴我實(shí)際上就只有這兩個(gè)差異基因,那我一定倍加珍惜它們!
可是,實(shí)際上并不是如此!我們?cè)倩剡^頭去看第一張dat
的矩陣,范圍就是10左右,并沒有成敗上千和0的,而成百上千的數(shù)據(jù),但未經(jīng)歸一化才出現(xiàn)既有成敗上千的數(shù)字又有表達(dá)量為0的。為了確定一下,我們?cè)偃PL平臺(tái)看看,到底是芯片還是二代測(cè)序數(shù)據(jù),如下圖,所以我們不需要log
了!
dat的矩陣在log
如果boxplot
以后看到,就這么規(guī)整,那么我們就不要再log
一次了!所以如果是這樣的的矩陣,又不小心給log
了,后果就是差異分析的結(jié)果變成logFC>1的有一個(gè),logFC<1的也只有1個(gè),就是上面的火山圖的樣子了。
最后,第一步step1-getdata
中找到倒數(shù)第四行字dat=log(dat 1)
去掉,再重新運(yùn)行一遍,就可以了!
下面是火山圖的分解代碼
plot(logFC,-log10(P.Value))
ggscatter(df, x = 'logFC', y = 'v',size=0.5)
ggscatter(df, x = 'logFC', y = 'v',size=0.5,color = 'g')
df$g=ifelse(df$P.Value>0.05,'stable', #if 判斷:如果這一基因的P.Value>0.01,則為stable基因
ifelse( df$logFC >1,'up', #接上句else 否則:接下來開始判斷那些P.Value<0.01的基因,再if 判斷:如果logFC >1.5,則為up(上調(diào))基因
ifelse( df$logFC < -1,'down','stable') )#接上句else 否則:接下來開始判斷那些logFC <1.5 的基因,再if 判斷:如果logFC <1.5,則為down(下調(diào))基因,否則為stable基因
)
ggscatter(df, x = 'logFC', y = 'v', color = 'g',size = 0.5,
label = 'name', repel = T,
#label.select = rownames(df)[df$g != 'stable'] ,
label.select =head(rownames(deg)), #挑選一些基因在圖中顯示出來
palette = c('#00AFBB', '#E7B800', '#FC4E07') )
ggsave('volcano.png')
ggscatter(df, x = 'AveExpr', y = 'logFC',size = 0.2)
df$p_c = ifelse(df$P.Value<0.001,'p<0.001',
ifelse(df$P.Value<0.01,'0.001<p<0.01','p>0.01'))
table(df$p_c )
ggscatter(df,x = 'AveExpr', y = 'logFC', color = 'p_c',size=0.2,
palette = c('green', 'red', 'black') )
很好的例子,可以理解了,什么時(shí)候該log,什么時(shí)候不log。
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